Cinética de crecimiento y producción de pigmentos de cepas nativas de Scenedesmus sp. aisladas de un sistema de tratamiento de agua residual en La Guajira colombiana
PDF
HTML
XML
VISOR

Palabras clave

Biotecnología
Clorofila
Microalgas
producción de pigmentos
tasa de crecimiento

Cómo citar

Díaz Escudero, J., Arena Cárdenas , D. A. C., & Galván Ayala, D. (2023). Cinética de crecimiento y producción de pigmentos de cepas nativas de Scenedesmus sp. aisladas de un sistema de tratamiento de agua residual en La Guajira colombiana. Ciencia E Ingeniería, 10(1), e8091836. https://doi.org/10.5281/zenodo.8091836

Resumen

Las microalgas son un grupo de microorganismos cuyos usos potenciales aún no han sido suficientemente estudiados, y uno de los géneros más comunes es Scenedesmus. Con el objetivo de investigar la cinética de crecimiento y producción de pigmentos de cepas de Scenedesmus sp. aisladas de un sistema de tratamiento de aguas residuales en el departamento de La Guajira, se llevaron a cabo cultivos discontinuos de tres cepas nativas (cepa N7, N10 y N15) de este microorganismo fotosintético. En diferentes ensayos, se evaluó la cinética de crecimiento (µ), la concentración de individuos (ind.mL-1) y la concentración de pigmentos liposolubles (clorofila a y carotenoides) e hidrosolubles (ficocianina, aloficocianina y ficoceritrina). En los ensayos, la cepa N15 mostró la mayor cinética de crecimiento (µ= 0,37 ± 0,34), aunque no se encontraron diferencias significativas (p>0,05) entre las diferentes cepas evaluadas. Sin embargo, la cepa N10 alcanzó la concentración máxima más alta (3.235.000 ± 735.391,05 ind.mL-1) en este ensayo. Además, la cepa 7 presentó una mayor concentración de pigmentos liposolubles e hidrosolubles, destacándose una mayor concentración de aloficocianina en todas las cepas evaluadas. En conclusión, las cepas utilizadas no mostraron diferencias significativas en cuanto a la cinética de crecimiento y concentración, pero sí hubo diferencias significativas en la concentración de pigmentos, siendo la cepa N7 la que presentó las mayores concentraciones de clorofila a y aloficocianina en comparación con las demás cepas.

https://doi.org/10.5281/zenodo.8091836
PDF
HTML
XML
VISOR

Citas

Barrientos, R. G., Legarreta, I. G., Scaife, M. A., & López, R. E. A. (2018). Utilización de pescados y mariscos: Tecnologías e innovación. Académica Española.

Bastidas, O. (2011). Conteo celular con hematocitómetro: Uso elemental del hematocitómetro. Neubauer Chamber Cell Counting.

Bennett, A., & Bogorad, L. (1973). Complementary chromatic adaptation in a filamentous blue-green alga. Journal of cell biology, 58(2), 419-435.

Bermúdez-Sierra, J. J., Oliveira-Leite, M., Reis-Coimbra, J. S., & Arêdes-Martins, M. (2013). Desempeño de dos técnicas de rompimiento celular en la caracterización de ficobiliproteínas en la microalga scenedesmus sp. Revista Tumbaga, 2(8), 65-79.

Beuckels, A., Smolders, E., & Muylaert, K. (2015). Nitrogen availability influences phosphorus removal in microalgae-based wastewater treatment. Water research, 77, 98-106.

Brito, D., Castro, A., Colivet, J., Gómez, E., & Mora, R. (2013). Cinética de crecimiento de un cultivo mixto de las microalgas Hyaloraphidium contortum y Pseudokirchneriella subcapitata. Interciencia, 38(8), 604-608.

Casais, E. (2014). Efecto tóxico de un herbicida frecuente en Galicia sobre una microalga dulceacuícola. Universidad Da Coruña.

Chávez, W. G., Barreto, J. G., Orbegoso, J. L., & Sarmiento, J. T. (2018). Efecto del fotoperiodo y temperatura en el crecimiento poblacional y producción de biomasa, proteínas y lípidos de Scenedesmus acutus. Revista Caxamarca, 17(1-2).

García-Cañedo, J. C., Cristiani-Urbina, E., Flores-Ortiz, C. M., Ponce-Noyola, T., & Olivia, R. (2009). Obtención de carotenoides a partir de la microalga Scenedesmus incrassatulus.

Garzón, A., & Gonzalez, J. D. (2019). Efecto de la intermitencia de la luz led sobre el crecimiento y producción de metabolitos de Scenedesmus obliquus. Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano.

Gómez, L. (2007). Microalgas: Aspectos ecológicos y biotecnológicos. Revista cubana de química, 19(2), 3-20.

González, M., Parra, O., & Cifuentes, A. (1995). Técnicas de cultivo de microalgas en laboratorio. Manual de métodos ficológicos, 219-250.

Guerrero, M. G., Rodríguez, H., Vargas, M., García-González, M., Campo, J. A. del, Moreno, J., & Rivas, J. (1999). Las microalgas como productoras de pigmentos con interés comercial.

Guillard, R. (1973). Division rates. En J. Stein (Ed.), Handbook of phycological methods (pp. 289-311). Cambridge University Press.

Hernández-Pérez, A., & Labbé, J. I. (2014). Microalgas, cultivo y beneficios. Revista de biología marina y oceanografía, 49(2), 157-173. https://doi.org/10.4067/S0718-19572014000200001

Infante, C., Angulo, E., Zárate, A., Florez, J. Z., Barrios, F., & Zapata, C. (2012). Propagación de la microalga Chlorella sp. En cultivo por lote: Cinética del crecimiento celular. Avances en Ciencias e Ingeniería, 3(2), 159-164.

Lawrenz, E., Fedewa, E. J., & Richardson, T. L. (2011). Extraction protocols for the quantification of phycobilins in aqueous phytoplankton extracts. Journal of Applied Phycology, 23(5), 865-871.

Maity, J. P., Bundschuh, J., Chen, C.-Y., & Bhattacharya, P. (2014). Microalgae for third generation biofuel production, mitigation of greenhouse gas emissions and wastewater treatment: Present and future perspectives–A mini review. Energy, 78, 104-113.

Marker, Nush, Rai, & Riemann. (1980). La medida de pigmentos fotosintéticos en agua dulce y estandarización de métodos: Conclusiones y recomendaciones. Archivos de Hidrobiología, 14, 91-106.

Martínez, V., Pellón, A., Pérez, E., Correa, O., Escobedo, R., Madruga, Y., Oña, A., & Arencibia, R. (2005). Producción de Biomasa de Scenedesmus obliquus en diferentes medios de cultivo. Revista CENIC. Ciencias Biológicas, 36(Especial).

Mora, R., Moronta, R., Ortega, J., & Morales, E. (2004). Crecimiento y producción de pigmentos de la microalga nativa Chlorella sp. Aislada de la Represa de Tulé, Municipio Mara, Estado Zulia, Venezuela. Ciencia, 12(2).

Pardo, J. Y., Moya, F. M., Ramírez, G. O., & Espinoza, S. M. (2017). Efecto del ensilado Biológico de Biofouilng en el crecimiento poblacional, contenido de clorofila a y carotenoides totales de Tetraselmis suecica. Sagasteguiana, 5(1), 29-36.

Ponte, G., & Ruiz, M. (2013). Efecto del extracto acuosos de harina de pescado en el crecimiento poblacional y contenido de β-caroteno en Dunaliella salina, en condiciones de laboratorio. Universidad Nacional del Santa. Chimbote.

Quevedo, C., Morales, S. P., & Acosta, A. (2008). Crecimiento de Scenedesmus sp en diferentes medios de cultivo para la producción de proteína microalgal. Vitae, 15(1), 25-31.

Strickland, & Parsons. (1972). Un manual práctico de análisis de agua de mar (Segunda).

Ulloa Mercado, R. G. (2011). Inducción de productos bioactivos en la microalga marina" Tetraselmis suecica".

Verduga Vera, M. E. (2020). Cultivo en batch de Scenedesmus spp., en aguas residuales de industrias lácteas: Crecimiento, Productividad y Composición bioquímica [Pregrado]. Universidad de Guayaquil.

Zhou, W. (2014). Potential applications of microalgae in wastewater treatments. Recent advances in microalgal biotechnology, 1-9.

Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.

Derechos de autor 2023 Julio Díaz Escudero, Dincol Arena Cárdenas Arena Cárdenas , Deysi Galván Ayala

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.